Практическое применение результатов исследования устойчивости микроорганизмов к дезсредствам при проведении микробиологического мониторинга в стационаре

Яскова О. А.
Ремедиум Приволжье, № 9 (168) 2018

Изучение структуры возбудителей ГСИ, уровня развития устойчивости к антимикробным препаратам позволяет оценивать эпидемиологическую обстановку в стационаре и проводить противоэпидемические мероприятия, направленные на снижение количества осложнений у пациентов хирургического профиля. 

Источник: https://polymus.ru/ru/museum/news/kak-bakterii-pomogayut-dobyvat-neft/

Микробиологический мониторинг за возбудителями гнойно-септических инфекций (ГСИ) является важной составляющей системы эпидемиологического надзора, направленной на повышение качества оказания медицинской помощи.

Цель исследования: определение структуры возбудителей ГСИ, уровня резистентности их к антибактериальным препаратам и дезинфицирующим средствам за 2015−2017 гг.

Материалы и методы

В течение 2015−2017 гг. исследовано 3957 образцов материала от пациентов (отделяемое ран, моча), находившихся на лечении в хирургическом стационаре. Микробиологические исследования проводились в бактериологической лаборатории больницы в рамках микробиологического мониторинга.

Использовались стандартные бактериологические методы выделения и идентификации микроорганизмов из клинического материала. Оценка антибиотикорезистентности проводилась диско-диффузионным методом с применением стандартных дисков на среде Мюллера-Хинтона согласно Клиническим рекомендациям «Определение чувствительности микроорганизмов к антимикробным препаратам» EUCAST (версия 4.0 2014).

Изучение устойчивости к дезинфицирующим средствам (ДС) проводилось в соответствии с федеральными клиническими рекомендациями «Способ определения чувствительности бактерий к дезинфицирующим средствам при мониторинге устойчивости к антимикробным препаратам в медицинских организациях», НП НАСКИ (2015). Статистическая обработка данных проведена с помощью лицензионного программного обеспечения Microsoft Excel 2007.

Результаты исследования

При исследовании 3957 образцов материала от пациентов выделено 2099 культур микроорганизмов. В целом, микробиологический пейзаж стационара отличается видовым разнообразием (25 видов бактерий). В этиологической структуре преобладают Staphylococcus spp. — 36,45±1,05%, среди которых удельный вес S. aureus составляет 60,26±1,77%.

Второй по частоте выделения была E. coli, на долю которой приходится 22,63±0,91%. Среди прочих культур, выделенных от больных, преобладали Enterococcus spp. (8,96±0,62%), K. pneumoniae (6,91±0,55%), Enterobacter spp. (4,57±0,46%). В структуре выделенной микрофлоры P. aeruginosa составляет 3,53±0,40%, Streptococcus spp. — 3,76±0,42%, Citrobacter spp. — 3,48±0,40% и Proteus spp. — 2,72±0,36.

Представители рода Candida встречались редко (2,19±0,32%). Изучена антибиотикорезистентность выделенных культур, при этом особое внимание уделялось этиологически значимым возбудителям гнойно-воспалительных заболеваний различной локализации (P. aeruginosa, K. pneumoniae, S. aureus, Enterococcus spp.). Анализ чувствительности микрофлоры к антимикробным препаратам позволил выявить высокий удельный вес полирезистентных штаммов K. pneumoniae — 28,97±3,77%.

Среди выделенных штаммов P. aeruginosa 8,11±3,17% были полирезистентными, у Enterococcus spp. — 3,19±1,28%. Среди S. aureus полирезистентные штаммы не выявлены, но 9,11±1,34% из них обладали устойчивостью ко всем β-лактамным антибиотикам (MRSA). Устойчивостью к макролидам характеризовались 29,5±2,12% штаммов, к линкозаминам — 12,58±1,54%, к ципрофлоксацину — 15,2±1,67%, к аминогликозидам — 4,12±0,93%.

Полностью чувствительными ко всем определяемым антибиотикам оказались 39,26±2,27% выделенных культур S. aureus. Высокая распространенность антибиотикорезистентности у выделенных штаммов K. pneumoniae наблюдалась к ципрофлоксацину (33,79±3,93%) и цефотаксиму (27,59±3,71%). Устойчивость к аминогликозидам проявили 10,34±2,53% штаммов, к меропенему — 3,45±1,52%.
Только 2,07±1,18% штаммов K. pneumoniae были полностью чувствительны к определяемым антибиотикам.

При этом выделено 6,21±2,0% панрезистентных штаммов. Изучение антибиотикорезистентности штаммов P. aeruginosa показало, что 21,62±4,79% были устойчивы к ципрофлоксацину, к меропенему — 10,81±3,61%, к цефтазидиму — 9,46±3,4%, к аминогликозидам — 8,11±3,17%. 50±5,81% штаммов P. aeruginosa были полностью чувствительны к определяемым антибиотикам.

Для бактерий рода Enterococcus спектр антибиотикорезистентности характеризовался достаточно невысоким уровнем устойчивости к ципрофлоксацину — 15,96±2,67%, к аминогликозидам -12,23±2,39%, к аминопенициллинам — 11,7±2,34%. Удельный вес ванкомицинрезистентных штаммов (VRE) составил 6,91±1,85%. Полностью чувствительными ко всем определяемым антибиотикам были 37,23±3,53% выделенных штаммов Enterococcus spp.

Таким образом, по результатам анализа выделенные культуры K. pneumoniae проявили наибольшую антибиотикорезистентность. За 2015−2017 гг. протестировано 145 штаммов микроорганизмов 12 видов бактерий, выделенных из клинического материала от пациентов и из внешней среды хирургического стационара.

Для проведения исследований были выбраны 10 ДС из разных химических групп в режимах, рекомендованных методическими указаниями по применению: три хлорсодержащих препарата (Сульфохлорантин-Д, Део-хлор люкс, Хлормисепт-эконом), два препарата на основе ЧАС (Оптимакс, ХОРТ лайт), четыре кожных антисептика на основе спиртов (Экобриз, Главсепт, Стерихэнд, Дезиптол) и один ДС — на основе перекиси водорода (БебиДез Ультра).

Выделенные из внешней среды хирургического стационара штаммы микроорганизмов (n=9) по результатам тестирования показали полную чувствительность к дезинфектантам. Из 136 штаммов, выделенных от пациентов, три проявили полную устойчивость к ДС на основе ЧАС, что составило 2,21±1,26%. Удельный вес устойчивых к ДС штаммов K. pneumoniae составил 5,56±3,82%, а также 6,67±6,44% из числа исследованных штаммов Enterobacter spp. Несмотря на то, что стафилококки доминируют в микробном пейзаже хирургического стационара, устойчивости к ДС среди них не выявлено.

Выводы

Таким образом, использование материалов микробиологического мониторинга позволяет оценить эпидемиологическую обстановку в стационаре и провести обоснованную замену ДС.

По вопросам публикации статей

Мутовкина Елена

Ответственный редактор

(831) 411-19-83 доб. 205

medalmanac@medalmanac.ru

Авторы
Яскова
Олеся Александровна
врач-эпидемиолог ГБУЗ КО «Междуреченская городская больница» МЗ РФ (Кемерово)
Подписка на новые материалы
Смотрите также
Эпидемии в эпоху Классического Средневековья в Европе
Изуткин Д. А.
Медицинский альманах, № 6 (57) 2018
БактериологияТерапияЭпидемиология и дезинфектология
Особенности антибиотикорезистентности внутрибольничных штаммов микроорганизмов, изолированных в монокультурах и в ассоциациях
Присакарь В. И., Спэтару Д. Ю.
Медиаль, №2 (22) 2018
БактериологияТерапияЭпидемиология и дезинфектология
Внутрибольничные инфекции, вызванные метициллинрези-стентными стафилококками (MRS)
Буга Д. В., Присакарь В. И., Сава В. И.
Медиаль, №2 (22) 2018
БактериологияТерапияЭпидемиология и дезинфектология
Оценка контаминации больничной среды кишечными вирусами в рамках эпидемиологического надзора за острыми кишечными инфекциями вирусной этиологии
Ковалишена О. В., Послова Л. Ю., Сергеева А. В.
Медицинский альманах, № 4 (55) 2018
БактериологияТерапияЭпидемиология и дезинфектология
Оценка информированности коренных малочисленных народов Ямало-Ненецкого автономного округа о рисках инфицирования ВИЧ
Истомин П. В.
Медицинский альманах, № 4 (55) 2018
БактериологияЭпидемиология и дезинфектология